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https://hdl.handle.net/20.500.12104/98144
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Campo DC | Valor | Lengua/Idioma |
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dc.contributor.author | Lomelí Nieto, José Alvaro | |
dc.date.accessioned | 2024-03-11T18:55:18Z | - |
dc.date.available | 2024-03-11T18:55:18Z | - |
dc.date.issued | 2022-02-09 | |
dc.identifier.uri | https://wdg.biblio.udg.mx | |
dc.identifier.uri | https://hdl.handle.net/20.500.12104/98144 | - |
dc.description.abstract | Introducción: La esclerosis sistémica (ES) es una enfermedad autoinmune rara con alta mortalidad, caracterizada por inflamación crónica y fibrosis; los cuales son dos procesos asociados con niveles incrementados del factor de crecimiento transformante β (TGF-β). Objetivo: Evaluar el impacto de los polimorfismos +869T>C y +915G>C del gen TGFB1, la expresión de TGF- (isoformas solubles, mRNA y expresión en piel) y sus receptores (TGF-R 1 y TGF-R2) como factores de riesgo en pacientes con ES. Métodos: se incluyeron 56 pacientes con ES y 120 sujetos control no relacionados (SC) del sur de México. Los genotipos de los polimorfismos +869T>C y +915G>C del gen TGFB1 se identificaron mediante la técnica reacción en cadena de la polimerasa-polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción (PCR-RFLP) y los niveles de las isoformas solubles de TGF-β (sTGF-β) se cuantificaron mediante inmunoensayos con microesferas magnéticas (MAGPIX). La expresión del mRNA de TGFB1 se determinó mediante qPCR, mientras que la caracterización in situ de TGF-β y los receptores TGF-βR1 y TGF-βR2 se realizó mediante tinción inmunohistoquímica de biopsias de piel. Resultados: Para el polimorfismo +869T>C, el genotipo CC se asoció con riesgo a ES mediante el modelo de herencia dominante (p = 0.040; OR = 2.82; IC = 1.021-7.793). Asimismo, el alelo C se asoció con 1.73 veces más riesgo para desarrollar ES (p = 0.020; OR = 1.73; IC = 1.087-2.762) comparándolo con el alelo T. Respecto al polimorfismo +915G>C, se observó una asociación del genotipo GC con riesgo a ES mediante un modelo dominante (p = 0.006; OR = 11.67; IC = 1.289-96.754); de manera similar, el alelo C se asoció con 11.17 veces más riesgo para el desarrollo de ES (p = 0.023; OR = 11.17; IC = 1.289-96.754). Por otra parte, la concentración de las tres isoformas de sTGF-β fue mayor en SC que en pacientes con ES (p0.05). La comparación de la expresión de 2 TGF-β1, TGF-βR1 y TGF-βR2 en biopsias de piel mostró que los pacientes con ES tienen mayor expresión de TGF-β1 y sus receptores que los SC a nivel de piel. Además, encontramos que el TGF-βR1 se encontró expresado en núcleo de SC, mientras que en pacientes con ES solamente se encontró en membrana y citoplasma. Conclusión: Ser portador de algún alelo polimórfico de ambas variantes estudiadas confiere susceptibilidad a padecer ES, sin embargo, la expresión del mRNA y de las isoformas solubles se observa que es menor en pacientes con ES que en SC. Por el contrario, la expresión en piel de TGF-β1, se observa aumentada significativamente en pacientes con ES que en SC y por lo tanto, existen mecanismos que regulan la expresión de TGF-β en diferentes estirpes celulares que contribuyen a la heterogeneidad de la ES. | |
dc.description.tableofcontents | ÍNDICE I. ÍNDICE DE FIGURAS ......................................................................................IV II. ÍNDICE DE CUADROS .....................................................................................V III. LISTA DE ABREVIATURAS............................................................................VII 1. RESUMEN .......................................................................................................... 1 2. ABSTRACT ......................................................................................................... 3 3. INTRODUCCIÓN ................................................................................................ 5 4. ANTECEDENTES ............................................................................................... 6 4.1 Generalidades de la ES................................................................................. 6 4.2 Epidemiología ................................................................................................ 7 4.3 Aspectos clínicos de la ES............................................................................. 8 4.3.1 Manifestaciones vasculares.....................................................................8 4.3.2 Manifestaciones cutáneas .....................................................................10 4.3.3 Manifestaciones digestivas ....................................................................11 4.3.4 Manifestaciones pulmonares .................................................................11 4.3.5 Manifestaciones cardiacas.....................................................................11 4.3.6 Manifestaciones renales ........................................................................12 4.3.7 Manifestaciones musculoesqueléticas...................................................12 4.4 Criterios de clasificación para la ES ............................................................ 12 4.5 Etiología....................................................................................................... 15 4.6 Factores de riesgo genéticos....................................................................... 15 4.7 Factores de riesgo ambientales................................................................... 16 4.8 Patogénesis ................................................................................................. 16 4.8.1 Inmunopatología de la ES......................................................................17 4.8.2 Respuesta celular a citocinas y fibrosis en ES ......................................19 4.8.3 Papel de TGF-β en el proceso de fibrosis..............................................21 4.8.4 Isoformas de TGF-β, receptores y su expresión en ES .........................22 4.8.5 Niveles de expresión de sTGF-β en ES.................................................25 4.8.6 Variantes en el gen TGFB1 ...................................................................25 5. JUSTIFICACIÓN ............................................................................................... 28 III 6. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ............................................................... 29 7. HIPÓTESIS ....................................................................................................... 30 8. OBJETIVOS ...................................................................................................... 31 8.1 Objetivo general........................................................................................... 31 8.2 Objetivos particulares .................................................................................. 31 9. DISEÑO METODOLÓGICO.............................................................................. 32 10. DIAGRAMA GENERAL DE LA METODOLOGÍA ............................................ 35 11. METODOLOGÍA.............................................................................................. 36 11.1 Extracción de DNA .................................................................................... 36 11.2 Amplificación de fragmentos de DNA por PCR.......................................... 37 11.3 Identificación de los polimorfismos +869T>C y +915G>C del gen TGFB1 mediante RFLPs....................................................................................... 38 11.4 Extracción de RNA total............................................................................. 40 11.5 Transcripción inversa................................................................................. 41 11.6 Cuantificación de la expresión del mRNA de TGFB1 ................................ 42 11.7 Cuantificación de los niveles de las isoformas de sTGF-β ........................ 43 11.7 Inmunohistoquímica de TGF-β, TGF-βR1 y TGF-βR2............................... 44 12. ANÁLISIS ESTADÍSTICO ............................................................................... 45 13. RESULTADOS................................................................................................ 46 13.1 Características clínicas y demográficas de los pacientes con ES ............. 46 13.2 Distribución de las frecuencias genotípicas y alélicas de los polimorfismos +869T>C y +915G>C del gen TGFB1 ............................... 50 13.4 Niveles solubles de las isoformas de TGF-β en pacientes con ES y SC ... 53 13.5 Niveles solubles de las isoformas de TGF-β por genotipos....................... 56 14. DISCUSIÓN .................................................................................................... 69 15. REFERENCIAS............................................................................................... 75 16. ANEXOS ......................................................................................................... 90 | |
dc.format | application/PDF | |
dc.language.iso | spa | |
dc.publisher | Biblioteca Digital wdg.biblio | |
dc.publisher | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.uri | https://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp | |
dc.subject | Polimorfismos 869T>C Y 915G>C | |
dc.subject | Esclerosis Sistemica | |
dc.title | ANÁLISIS DE LOS POLIMORFISMOS +869T>C Y +915G>C EN EL GEN TGFB1, LA EXPRESIÓN DE TGF-β (ISOFORMAS SOLUBLES, mRNA Y EXPRESIÓN EN PIEL) Y SUS RECEPTORES (TGF-βR1 Y TGF-βR2) EN ESCLEROSIS SISTÉMICA | |
dc.title.alternative | ANÁLISIS DE LOS POLIMORFISMOS +869T>C Y +915G>C EN EL GGF-β (ISOFORMAS SOLUBLES, mRNA Y EXPRESIÓN EN PIEL) Y SUS RECEPTORES (TGF-βR1 Y TGF-βR2) EN ESCLEROSIS SISTÉMICA | |
dc.type | Tesis de Doctorado | |
dc.rights.holder | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.holder | Lomelí Nieto, José Alvaro | |
dc.coverage | GUADALAJARA, JALISCO | |
dc.type.conacyt | doctoralThesis | |
dc.degree.name | DOCTORADO EN GENETICA HUMANA | |
dc.degree.department | CUCS | |
dc.degree.grantor | Universidad de Guadalajara | |
dc.degree.creator | DOCTOR EN GENETICA HUMANA | |
dc.contributor.director | Hernández Bello, Jorge | |
dc.contributor.codirector | Muñoz Valle, José Francisco | |
Aparece en las colecciones: | CUCS |
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