Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/81870
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dc.contributor.advisorRodríguez Macías, Ramón
dc.contributor.advisorBernabé Antonio, Antonio
dc.contributor.advisorZamora Natera, Juan Francisco
dc.contributor.advisorPortillo Martínez, Liberato
dc.contributor.authorNuñez Gavica, Karla María
dc.date.accessioned2020-08-16T01:43:50Z-
dc.date.available2020-08-16T01:43:50Z-
dc.date.issued2017-07-14
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/81870-
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.description.abstractLupinus exaltatus y Lupinus elegans son especies nativas de México, y en el estado de Jalisco se localiza en zonas abiertas en bosques de pino-encino. Se caracterizan por contener alcaloides que actúan contra microorganismos, mamíferos, insectos. Se establecieron cultivos de callo para determinar la presencia de alcaloides en sus extractos. Se evaluaron las auxinas ácido naftalenacético, ácido 2,4-diclorofenoxiacético y picloram y la citocinina cinetina usando el medio de cultivo Murashige y Skoog. La inducción de callo se realizó con explantes de tallo de plántulas de cultivo in vitro de 36 d de edad. Para L. exaltatus los tratamientos con picloram (5.37 μM) y cinetina (0.54 μM o 10.74 μM) mostraron los mayores porcentajes de inducción (100 %), mientras que en L. elegans el mayor porcentaje (68.75 %) ocurrió con 2,4-diclorofenoxiacético (16.11 μM) y cinetina (16.11 μM); además, mostraron callos friables, los cuales puede ser usados para el establecimiento de cultivos de células en suspensión. Los extractos de cultivos de callo, plántulas de los cultivos in vitro y planta silvestre, de ambas especies, fueron comparados mediante cromatografía en capa fina, observándose solo presencia de alcaloides en los extractos de la planta silvestre y en plántulas de cultivo in vitro. En los callos del mejor tratamiento de L. exaltatus (5.37 μM picloram y 0.54 μM cinetina) y de L. elegans (16.11 μM 2,4-diclorofenoxiacético y 16.11 μM cinetina) se cuantificaron los alcaloides totales, encontrándose concentraciones de 0.48 y 0.34 mg EATr g-1 biomasa, respectivamente. Con el análisis por cromatografía de gases se determinó la presencia de algunos alcaloides como lupanina, isolupanina, hidroxilupanina, pero en concentraciones trazas.
dc.description.tableofcontentsÍNDICE DE CUADROS ....................................................................................................... iv ÍNDICE DE FIGURAS .......................................................................................................... v RESUMEN ......................................................................................................................... viii ABSTRACT ........................................................................................................................... ix 1. INTRODUCCIÓN ........................................................................................................... 1 2. ANTECEDENTES .......................................................................................................... 2 2.1. Historia general de Lupinus ..................................................................................... 2 2.2. Descripción botánica y morfológica ........................................................................ 2 2.3. Clasificación taxonómica ......................................................................................... 3 2.4. Distribución geográfica ............................................................................................ 4 2.5. Importancia del género Lupinus ............................................................................... 4 2.6. Los Lupinus en México ............................................................................................ 5 2.7. Metabolitos secundarios en plantas .......................................................................... 8 2.7.1. Alcaloides ......................................................................................................... 8 2.7.1.1. Alcaloides quinolizidínicos y distribución .................................................... 9 2.7.1.2. Alcaloides quinolizidínicos en Lupinus ...................................................... 10 2.7.1.3. Método de extracción de alcaloides ............................................................ 12 2.8. Cultivo de tejidos de plantas .................................................................................. 12 2.8.1. Reguladores de crecimiento vegetal ............................................................... 13 3. HIPÓTESIS ................................................................................................................... 15 4. OBJETIVOS .................................................................................................................. 15 4.1. Objetivo general ..................................................................................................... 15 4.2. Objetivos específicos ............................................................................................. 15 5. MATERIALES Y MÉTODOS ...................................................................................... 16 5.1. Obtención del material vegetal ............................................................................... 16 5.2. Germinación de semillas ........................................................................................ 17 5.2.1. Desinfección de las semillas ........................................................................... 17 5.2.2. Germinación y condiciones de incubación ..................................................... 17 5.3. Inducción de callo .................................................................................................. 17 5.3.1. Medio de cultivo para inducción de callo ....................................................... 17 5.3.2. Evaluación de auxinas para inducir callo ....................................................... 18 5.3.3. Evaluación de auxinas con antioxidantes ....................................................... 18 5.3.4. Evaluación en condiciones de oscuridad ........................................................ 19 5.3.5. Evaluación de tratamientos con agua de coco ................................................ 19 5.3.6. Inducción de callo de acuerdo a la auxina para cada especie ......................... 19 5.4. Proceso de extracción de alcaloides ....................................................................... 20 5.5. Determinación de alcaloides por cromatografía en capa fina ................................ 21 5.6. Determinación de alcaloides totales ....................................................................... 22 5.7. Análisis por cromatografía de gases acoplado a espectrometría de masas (GC/MS) ................................................................................................................................ 23 5.8. Análisis estadístico ................................................................................................. 23 6. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ................................................................................... 24 6.1. Germinación de semillas ........................................................................................ 24 6.2. Inducción de callo .................................................................................................. 24 6.2.1. Evaluación de auxinas .................................................................................... 25 6.2.2. Evaluación de auxinas con antioxidante ......................................................... 26 6.2.3. Evaluación en condiciones de oscuridad ........................................................ 27 6.2.4. Evaluación de tratamientos con agua de coco ................................................ 29 6.2.5. Inducción de callo para cada especie de acuerdo con las auxinas utilizadas .. 31 6.3. Rendimiento de extractos ....................................................................................... 34 6.4. Determinación de alcaloides por cromatografía en capa fina ................................ 35 6.5. Determinación de alcaloides totales ....................................................................... 38 6.6. Análisis por cromatografía de gases acoplado a espectrometría de masas (GC/MS) ................................................................................................................................ 39 7. CONCLUSIONES ......................................................................................................... 42 8. LITERATURA CITADA .............................................................................................. 43
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectBosque De Pinoencino
dc.subjectcomatografia
dc.subjectAlcaloides
dc.titleEstablecimiento de cultivos de células de Lupinus spp. para la obtención de alcaloides
dc.typeTesis de Maestría
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderNuñez Gavica, Karla María
dc.coverageZAPOPAN, JALISCO
dc.type.conacytmasterThesis-
dc.degree.nameMaestría en Ciencias en Biosistemática y Manejo de Recursos Naturales y Agrícolas-
dc.degree.departmentCUCBA-
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara-
dc.degree.creatorMaestra en Ciencias en Biosistemática y Manejo de Recursos Naturales y Agrícolas-
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