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https://hdl.handle.net/20.500.12104/104878
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Campo DC | Valor | Lengua/Idioma |
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dc.contributor.author | Aguilar Vázquez, Andrea Fernanda | |
dc.date.accessioned | 2024-09-18T17:31:45Z | - |
dc.date.available | 2024-09-18T17:31:45Z | - |
dc.date.issued | 2023-04-19 | |
dc.identifier.uri | https://wdg.biblio.udg.mx | |
dc.identifier.uri | https://hdl.handle.net/20.500.12104/104878 | - |
dc.description.abstract | Antecedentes: las miopatías inflamatorias idiopáticas (MII) son un grupo heterogéneo de enfermedades autoinmunes que afectan a los músculos que presentan una serie de características clínicas, demográficas, histológicas e inmunopatológicas que permiten agruparlas en distintos subgrupos, sin embargo; el diagnóstico y clasificación de las MII permanecen complejos debido a la poca información disponible sobre la patogenia de la enfermedad, así como por la heterogeneidad y superposición de características de los subgrupos.El empleo de tecnologías como la Microscopia Electrónica de Barrido (MEB), permite un análisis histológico con mayor resolución para la apropiada caracterización de la fibra muscular de pacientes con MII, lo que, en conjunto con la detección de autoanticuerpos y la cuantificación de citocinas y quimiocinas, nos posibilita profundizar y comprender mejor la fisiopatología de la enfermedad. Objetivo: caracterizar la ultraestructura de la fibra muscular y asociar el perfil inmunológico con las características fisiopatológicas de los pacientes clasificados con MII. Material y Métodos: en este estudio transversal, se obtuvo biopsia muscular de doce pacientes clasificados con MII de acuerdo con los criterios EULAR/ACR 2017, de los cuales se logró caracterizar la ultraestructura de la fibra muscular de 10 pacientes. Se obtuvieron muestras de suero y músculo de cada paciente. Para la caracterización del perfil inmunológico se realizó la detección de autoanticuerpos (Ro-52, OJ, EJ, PL7, PL12, SRP, Jo-1, PMScl75, PMScl100, Ku, SAE1, NXP2, MDA5, TIF1γ, Mi-2α, Mi-2β) con el kit del inmunoensayo en línea Euroline: Autoimmune Inflammatory Myopathies de EUROIMMUN a PerkinElmer company, Medizinische Labordiagnostika; así como la cuantificación de citocinas (IL-1β, IFN-α2, IFN-γ, TNF-α, IL-6, IL-10, IL-12p70, IL-17A, IL-18, IL-23, IL-33) y quimiocinas (CCL2, CXCL8) mediante el kit para el ensayo multiplex basado en perlas LEGENDplexTM Multi-Analyte Flow Assay Kit de BioLegend®. El análisis histológico del músculo se realizó mediante la tinción hematoxilina-eosina mientras que la ultraestructura de la fibra muscular se caracterizó mediante MEB. Resultados: se observó que la estructura y la morfología de la fibra muscular se ve afectada de acuerdo con la disminución de la fuerza muscular y el aumento de enzimas musculares séricas. Se encontró diferencia en los niveles séricos de IL-6 de pacientes con MII con respecto a sujetos control (11.3 ± 7.69 vs 5.0 ± 4. 33, P = 0.028). Así mismo, se detectó diferencia en los niveles séricos de IFN-γ (12.1 ± 10.80 vs 1.7 ± 2.23 pg/mL, P = 0.048) y CCL2 (294.8 ± 85.11 vs 116.3 ± 66.41 pg/mL, P = 0.005) en pacientes seropositivos. Finalmente, de acuerdo con la asociación entre enzimas musculares, puntaje de MMT8, citocinas y anticuerpos, se observó correlación entre los niveles séricos de aldolasa y CXCL8 (rs = -0.929, P = 0.003) así como entre los niveles séricos de LDH e IFN-γ (rs = 0.692, P = 0.027), este último resultado también se vio reflejado en mayores niveles séricos de IFN-γ (16.9 ± 11.09 pg/mL, vs 2.2 ± 3.6, P = 0.018) en pacientes con niveles elevados de LDH, así como mayores niveles de LDH en pacientes seropositivos (289.4 ± 87.61 vs 168.8 ± 32.71 U/L, P = 0.031). Conclusión: la ultraestructura de la fibra muscular se observa con marcadas irregularidades, porosidades, disrupción de la linealidad e integridad del fascículo conforme los niveles séricos de enzimas musculares aumentan y la fuerza muscular de los pacientes disminuye. Así mismo, los niveles séricos de IFN-γ son mayores en pacientes con LDH fuera del rango normal mientras que los niveles séricos de LDH son mayores en pacientes seropositivos. | |
dc.description.tableofcontents | INTRODUCCIÓN........................................................................................20 II. ANTECEDENTES.......................................................................................21 2.1 Miopatías inflamatorias idiopáticas.............................................21 2.2 Criterios de clasificación de MII..................................................21 2.2.1 Criterios EULAR/ACR 2017............................................................ 22 2.3 Signos y características clínicas de los grupos de MII.....................24 2.3.1 Dermatomiositis (DM)..................................................................... 25 2.3.2 Dermatomiositis juvenil (DMJ) ........................................................ 27 2.3.3 Dermatomiositis amiopática (DMA) ................................................ 28 2.3.4 Polimiositis (PM)............................................................................. 28 2.3.5 Miopatía necrotizante inmunomediada (MNIM) .............................. 29 2.3.6 Miositis por cuerpos de inclusión (MCI).......................................... 30 2.3.7 Miositis juvenil................................................................................. 31 2.4 Epidemiología........................................................................32 2.5 Inmunopatología de las miopatías inflamatorias Idiopáticas.............32 2.5.1 Inmunopatología de DM ................................................................. 32 2.5.2 Inmunopatología de PM e MCI ....................................................... 35 2.5.3 Inmunopatología de MNIM ............................................................. 38 vi 2.6 Técnicas de apoyo para la clasificación de miopatías inflamatorias Idiopáticas....................................................................................41 2.6.1 Electromiografía.............................................................................. 42 2.6.2 Imagen de Resonancia Magnética (IRM) ....................................... 42 2.6.3 Enzimas musculares....................................................................... 44 2.6.4 Autoanticuerpos específicos de miositis ......................................... 44 2.6.5 Biopsia muscular ............................................................................ 58 III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA.........................................................68 3.1 Pregunta de investigación.........................................................68 IV. HIPÓTESIS....................................................................................................69 V. OBJETIVOS................................................................................................70 5.1 Objetivo general.....................................................................70 5.2 Objetivos particulares..............................................................70 VI. DISEÑO METODOLÓGICO .......................................................................71 6.1 Tipo de estudio.......................................................................71 6.2 Sede del estudio.....................................................................71 6.3 Universo de estudio.................................................................71 6.4 Cálculo del tamaño de la muestra..............................................71 6.5 Periodo de estudio..................................................................71 6.6 Criterios de selección de los grupos de estudio.............................72 6.6.1 Criterios de inclusión ...................................................................... 72 6.6.2 Criterios de no inclusión ................................................................. 72 6.6.3 Criterios de exclusión ..................................................................... 72 6.7 Variables...............................................................................72 6.7.1 Variable independiente ................................................................... 72 6.7.2 Variables dependientes .................................................................. 72 6.7.3 Variables intervinientes................................................................... 72 vii 6.8 Métodos................................................................................72 6.8.1 Toma de muestra sanguínea.......................................................... 73 6.8.1.1 Preparación de la muestra de suero......................................73 6.8.2 Toma de muestra de tejido muscular.............................................. 75 6.8.2.1 Microscopía óptica (tinción Hematoxilina-Eosina)....................... 75 6.8.2.2 Microscopia Electrónica de Barrido ............................................. 76 6.9 Consideraciones éticas............................................................78 6.10 Análisis estadístico..................................................................79 VII. RESULTADOS ..........................................................................................80 VIII. DISCUSIÓN.............................................................................................100 IX. CONCLUSIONES .....................................................................................107 X. BIBLIOGRAFIA.........................................................................................108 XI. ANEXOS...................................................................................................116 11.1 Anexo 1: Criterios de clasificación de Medsger, 1970...................116 11.2 Anexo 2: Criterios de clasificación de Bohan y Peter, 1975............117 11.3 Anexo 3: Participación de citocinas y quimiocinas en las miopatías inflamatorias idiopáticas...............................................................118 11.4 Anexo 4: Operacionalización de variables.................................124 11.5 Anexo 5: Registro estatal del protocolo....................................127 11.6 Anexo 6: Consentimiento informado para el ingreso al estudio......128 11.7 Anexo 7: Procedimiento general del inmunoensayo en línea.........131 11.8 Anexo 8: Procedimiento general del ensayo multiplex basado en perlas.......................................................................................132 11.9 Anexo 9: Procedimiento general de la tinción por Hematoxilina- Eosina.......................................................................................134 11.10 Anexo 10: Procedimiento general de la preparación de la muestra para Microscopia Electrónica de Barrido...................................................135 11.11 Anexo 11: Gráficas de resultados........................................136 viii 11.12 Anexo 12: Imágenes obtenidas mediante microscopia óptica (tinción Hematoxilina-Eosina).....................................................................139 11.13 Anexo 13: Imágenes obtenidas mediante microscopia electrónica de barrido.........................................................................................141 11.14 Anexo 14: Rangos de detección de las citocinas y quimiocinas evaluadas con el ensayo multiplex basado en perlas.............................147 11.15 Anexo 15: Terapia inmunosupresora de cada paciente incluido en el estudio.........................................................................................148 11.16 Anexo 16: Productividad académica (2019 – 2021)...................149 | |
dc.format | application/PDF | |
dc.language.iso | spa | |
dc.publisher | Biblioteca Digital wdg.biblio | |
dc.publisher | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.uri | https://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp | |
dc.subject | Fibra Muscular | |
dc.subject | Perfil Inmunologico | |
dc.subject | Miopatias Inflamatorias Idiopaticas | |
dc.title | “Caracterización de la ultraestructura de la fibra muscular y asociación del perfil inmunológico con las características clínicas de los pacientes clasificados con miopatías inflamatorias idiopáticas” | |
dc.type | Tesis de Doctorado | |
dc.rights.holder | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.holder | Aguilar Vázquez, Andrea Fernanda | |
dc.coverage | GUADALAJARA, JALISCO | |
dc.type.conacyt | doctoralThesis | |
dc.degree.name | DOCTORADO EN CIENCIAS BIOMEDICAS | |
dc.degree.department | CUCS | |
dc.degree.grantor | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.access | openAccess | |
dc.degree.creator | DOCTOR EN CIENCIAS BIOMEDICAS | |
dc.contributor.director | Vázquez Del Mercado Espinosa, Mónica | |
dc.contributor.codirector | Salazar Páramo, Mario | |
Aparece en las colecciones: | CUCS |
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