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https://hdl.handle.net/20.500.12104/104839
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Campo DC | Valor | Lengua/Idioma |
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dc.contributor.author | Osorio Antonio, Sergio Eduardo | |
dc.date.accessioned | 2024-09-18T17:22:15Z | - |
dc.date.available | 2024-09-18T17:22:15Z | - |
dc.date.issued | 2024-07-11 | |
dc.identifier.uri | https://wdg.biblio.udg.mx | |
dc.identifier.uri | https://hdl.handle.net/20.500.12104/104839 | - |
dc.description.abstract | Actualmente, las enzimas comercialmente disponibles no son estables cuando son expuestas a condiciones de reacción extremas, tales como altas temperaturas, niveles altos o bajos de pH, altas concentraciones salinas, solventes orgánicos, etc. (1). En tales condiciones de reacción, las enzimas comerciales son irreversiblemente desnaturalizadas. Esta situación ha llevado a la investigación de microorganismos extremófilos, para entender los niveles de adaptación que han desarrollado, su supervivencia en condiciones extremas y también, estudiar las bases moleculares de la estabilidad de sus enzimas (2). Un grave conflicto que se ha encontrado en los estudios que involucran la producción de enzimas lipolíticas de arqueas halófilas nativas, es que su nivel de producción es extremadamente bajo en los cultivos. Debido a esta dificultad, la comunidad científica ha orientado sus esfuerzos de investigación, hacía la clonación y expresión de enzimas de microorganismos halófilos extremos, empleando técnicas de Biología Molecular. El huésped más usado en la producción de enzimas recombinantes es Escherichia coli; sin embargo, este huésped difícilmente se puede usar para la expresión de enzimas recombinantes de halófilos extremos, ya que éste no es microorganismo halófilo. Debido a que el citoplasma de E. coli carece de sal, el plegamiento de las proteínas recombinantes halofílicas es defectuoso y en la mayoría de las ocasiones, las proteínas son sintetizadas en masas proteínicas (cuerpos de inclusión); los cuales, generalmente, carecen de función catalítica. | |
dc.description.tableofcontents | índice 1. Antecedentes .............................................................................................................................. 5 2. Revisión bibliográfica ................................................................................................................. 7 2.1. Conceptos de biotecnología. .............................................................................................. 7 2.2. Enzimas ............................................................................................................................... 7 2.2.1. Enzimas lipolíticas ....................................................................................................... 8 2.2.2. Hidrolisis enzimática.................................................................................................... 9 2.2.3. Estereoespecificidad. .................................................................................................. 9 2.2.4. Esterificación. ............................................................................................................ 10 2.3. Clasificación de los seres vivos. ........................................................................................ 11 2.3.1. Clasificación de los seres vivo en dominios. .............................................................. 12 2.4. Microorganismos genéticamente modificados. .............................................................. 17 2.5. Enzimas recombinantes.................................................................................................... 18 2.6. Herramientas utilizadas en biología molecular ............................................................... 19 2.6.1. Electroporación. ........................................................................................................ 19 2.6.2. Inducción enzimática. ................................................................................................ 20 2.6.3. Operón lactosa y operón triptófano. ........................................................................ 21 3. Justificación, hipótesis y objetivos ........................................................................................... 25 3.1. Justificación. ..................................................................................................................... 25 3.2. Hipótesis. .......................................................................................................................... 26 3.3. Objetivos ........................................................................................................................... 27 3.3.1. Objetivo general. ....................................................................................................... 27 3.3.2. Objetivos específicos. ................................................................................................ 27 4. Materiales y métodos ............................................................................................................... 28 4.1. Cepa de arqueas. .............................................................................................................. 28 4.2. Medios de cultivo ............................................................................................................. 28 4.2.1. Medio Hv-Ca .............................................................................................................. 28 4.2.2. Medio Hv-YPC ............................................................................................................ 29 4.3. Producción de biomasa de las cepas transformadas. ..................................................... 29 4.4. Expresión enzimática en los cultivos de las cepas transformadas de Haloferax volcanii 29 4.5. Lisis celular ........................................................................................................................ 29 4.5.1. Sonicación. ................................................................................................................ 30 3 4.5.2. Presión osmótica. ...................................................................................................... 30 4.5.3. Presión osmótica y sonicación. ................................................................................. 30 4.6. Ensayo enzimático. ........................................................................................................... 31 4.7. Efecto de la temperatura en la estabilidad de la enzima lipolítica del extracto crudo. 32 4.8. Efecto de concentración de NaCl en la estabilidad de la enzima lipolítica del extracto crudo. 32 4.9. Purificación por cromatografía liquida. ........................................................................... 32 4.9.1. Purificación por columna de intercambio iónico. ..................................................... 33 4.9.2. Purificación por columna de interacción hidrofóbica. .............................................. 33 4.9.3. Purificación por columna de afinidad. ...................................................................... 34 4.10. Electroforesis. ............................................................................................................... 35 4.11. Tinción de geles. ........................................................................................................... 35 4.11.1. Preparación de reactivo de Bradford. ....................................................................... 35 4.11.2. Tinción de plata. ........................................................................................................ 35 4.12. Caracterización bioquímica de la enzima recombinante. ........................................... 36 4.12.1. Ensayo de actividad enzimática frente a diferentes sustratos.................................. 36 4.12.2. Efecto de la temperatura de incubación en la actividad lipolítica. ........................... 36 4.12.3. Efecto del pH en la actividad enzimática. ................................................................. 37 4.12.4. Efecto de la concentración de NaCl en la actividad enzimática. ............................... 37 4.12.5. Efecto de los metales en la actividad enzimática ...................................................... 37 4.12.6. Efecto de los inhibidores sobre la actividad enzimática. .......................................... 37 4.12.7. Efecto de los detergentes sobre la actividad enzimática. ......................................... 37 5. Resultados y discusiones. ......................................................................................................... 38 5.1. Activación de las cepas transformadas de Haloferax volcanii 1424 y 1296 ................... 38 5.2. Rompimiento celular ........................................................................................................ 44 5.2.1. Rompimiento celular por sonicación ........................................................................ 44 5.2.2. Rompimiento celular por choque osmótico .............................................................. 44 5.2.3. Rompimiento celular por sonicación y choque osmótico ......................................... 46 5.3. Expresión enzimática de las cepas transformadas de Haloferax volcanii ...................... 46 5.4. Efecto de la temperatura de incubación y de la concentración de NaCl en la estabilidad de la esterasa del extracto enzimático crudo de la cepa transformada de Haloferax volcanii . 49 5.5. Purificación de la enzima lipolítica recombinante por cromatografía liquida ............... 52 5.5.1. Purificación por columna de intercambio iónico. ..................................................... 52 5.5.2. Purificación por columna de interacción hidrofóbica. .............................................. 53 4 5.5.3. Purificación por cromatografía de afinidad. ............................................................. 54 5.6. Electroforesis de las muestras obtenidas mediante las diferentes estrategias cromatográficas ............................................................................................................................ 57 5.6.1. Electroforesis en gel de poliacrilamida para las eluciones en columna de Q Sepharose. ................................................................................................................................. 57 5.6.2. Electroforesis en gel de poliacrilamida para las eluciones en columna de butyl Sepharose. ................................................................................................................................. 58 5.6.1. Electroforesis en gel de poliacrilamida para las eluciones en columna de afinidad Ni+. 59 5.6.1. Electroforesis en gel de poliacrilamida para las eluciones en columna de afinidad Ni+ realizada de manera manual ..................................................................................................... 60 5.7. Caracterización bioquímica de la enzima lipolítica recombinante ................................. 61 5.7.1. Ensayo de actividad enzimática frente a diferentes sustratos.................................. 62 5.7.2. Determinación de temperatura óptima .................................................................... 62 5.7.3. Efecto del pH en la actividad enzimática .................................................................. 63 5.7.4. Efecto de la concentración de NaCl en la actividad enzimática ................................ 64 5.7.5. Efecto de los iones metálicos en la actividad enzimática ......................................... 65 5.7.6. Efecto de los inhibidores en la actividad esterasa de la enzima recombinante ....... 66 5.7.7. Efecto de los detergentes en la actividad esterasa de la enzima recombinante pura 66 6. Conclusiones ............................................................................................................................. 67 7. Referencias bibliográficas. ....................................................................................................... 69 | |
dc.format | application/PDF | |
dc.language.iso | spa | |
dc.publisher | Biblioteca Digital wdg.biblio | |
dc.publisher | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.uri | https://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp | |
dc.subject | Produccion | |
dc.subject | Caracterizacion Bioquimica | |
dc.subject | Enzima Lipolitica Recombinante | |
dc.subject | Arquea Halofila | |
dc.subject | Haloferax Volcanii | |
dc.subject | Sistema De Expresion. | |
dc.title | Producción y caracterización bioquímica de una enzima lipolítica recombinante proveniente de una arquea halófila, empleando a Haloferax volcanii como sistema de expresión. | |
dc.type | Tesis de Maestría | |
dc.rights.holder | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.holder | Osorio Antonio, Sergio Eduardo | |
dc.coverage | GUADALAJARA, JALISCO | |
dc.type.conacyt | masterThesis | |
dc.degree.name | MAESTRIA EN CIENCIAS EN QUIMICA | |
dc.degree.department | CUCEI | |
dc.degree.grantor | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.access | openAccess | |
dc.degree.creator | MAESTRO EN CIENCIAS EN QUIMICA | |
dc.contributor.director | Córdova López, Jesús Antonio | |
dc.contributor.codirector | Ortega De La Rosa, Nestor David | |
Aparece en las colecciones: | CUCEI |
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