Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/91944
Registro completo de metadatos
Campo DCValorLengua/Idioma
dc.contributor.authorMuñiz Flores, Jorge Adrián
dc.date.accessioned2023-04-18T21:58:54Z-
dc.date.available2023-04-18T21:58:54Z-
dc.date.issued2018-09-27
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/91944-
dc.description.abstractLa exportación de papayas mexicanas enfrenta dos importantes retos; (I) la ocurrencia de brotes de salmonelosis en EUA y (II) el cumplimiento del Produce Safety Rule (PSR), de la Ley de Modernización en Inocuidad de Alimentos (FSMA, por sus siglas en inglés). El contenido del reglamento se fundamenta en la prevención de la contaminación y la justificación científica de las decisiones tendientes a preservar la inocuidad. En México, la información sobre la dinámica de microorganismos indicadores y Salmonella durante el ciclo productivo de papaya es escasa y en consecuencia los fundamentos para tomar decisiones con principios científicos son limitados. El objetivo de esta investigación fue determinar la prevalencia de Salmonella y de grupos microbianos indicadores en papaya, agua y ambiente durante el cultivo, cosecha y empaque, así como evaluar efectividad del método de lavado del fruto aplicado a unidades productoras de Tecomán, Colima. Se seleccionó una empresa productora de papaya ubicada en Tecomán, Colima, cuyas prácticas de producción fueran las imperantes en la región. Se realizaron dos muestreos antes y dos después del temporal de lluvia durante los cuales se recolectaron muestras de agua de irrigación, agua potabilizada, tierra, superficies de empaque (clasificadas por el criterio de zonificación higiénica del PSR) y frutos. Durante los muestreos se determinó el pH, ORP, concentración de desinfectantes y temperatura de las soluciones de lavado y la temperatura superficial de los frutos en cada etapa del proceso de producción. En el agua se cuantificó E. coli por filtración por membrana (FM), en la tierra coliformes totales, fecales y E. coli por Número Más Probable. En superficie y frutos se cuantificaron enterobacterias (Eb), coliformes totales (CT), E. coli y mohos y levaduras (M/L) por Petrifilm™. A todas las muestras se les determinó Salmonella por el método de cultivo de la FDA y por amplificación molecular isotérmica con el MDS™ de 3M™. Por otro lado, se evaluó la efectividad de procedimiento de lavado en condiciones controladas en el laboratorio. Se inocularon papayas con una mezcla de cepas de Salmonella y se sometieron a un tratamiento de lavado simulando las condiciones del tratamiento aplicado en el empaque. Se evaluó la infiltración de Salmonella por inmersión del pedúnculo en una suspensión de cepas según tiempo de contacto (30 s, 1 min y 15 min) y largo del pedúnculo (>3 cm, 2-3 cm y 0.5-1 cm). En el agua para irrigación los niveles de E. coli previo al temporal de lluvias se encontraron por debajo del límite establecido en el PSR, sin embargo, después del iii 4 temporal de lluvia lo superaron. La prevalencia de Salmonella fue mayor al 65% y no se observó diferencia significativa según la época del año. Los principales serotipos aislados fueron S. 35, S. Bareilly, S. C1, S. E1, S. Infantis, S. Muenchen, S. Oranienburg y S. Poona. El potabilizada fue negativa para E. coli y Salmonella. En las muestras de tierra los indicadores se incrementaron después del temporal de lluvia. Se aisló Salmonella en la tierra entre los cultivos, el serotipo identificado fue S. Bareilly, cuatro muestras de tierra en las inmediaciones del sistema de extracción de agua de río también fueron positivas para el patógeno, los serotipos identificados fueron S. C1 y S. Oranienburg. Con respecto a las muestras de superficie recolectadas en las instalaciones de empaque, se detectó E. coli en las manos de un empacador, en una tarima, en el suelo y en un remolque con papayas cosechadas. En las muestras de papayas las cifras de Eb durante lavado se mantuvieron, mientras que, se observó una reducción en las cifras de CT posterior al lavado con soluciones cloradas, sin embargo los niveles se incrementaron después de la inmersión en el contenedor con ácido peroxiacético y tiabendazol. Los M/L se redujeron significativamente después del lavado. El máximo diferencial de temperatura del fruto en el campo cuando está expuesto al sol y cuando es sumergido al primer contenedor de lavado es de 9.5°C. En el experimento intralaboratorio del tratamiento de lavado se observó que, cuando se siguió el procedimiento de la empresa para la preparación de las soluciones, el pH y ORP fueron 5.5 y >850 mV en soluciones cloradas y 6.5 y >400 mV en soluciones con ácido peroxiacético. La concentración de cloro libre fue 500 mg/L, esta concentración es excesiva para los procesos de lavado de frutos por lo tanto deben realizarse ajustes en el procedimiento. Se observó una reducción de 2.5 ± 0.9 y 3.6 ±0.5 Log10 UFC de Salmonella/mL con las soluciones cloradas y la solución de ácido peroxiacético con tiabendazol, respectivamente. Las soluciones fueron inactivadas en menos de 2 h posterior a la adición de materia orgánica. En el experimento de infiltración se detectó Salmonella en pulpa y semillas de papaya por efecto de la inmersión, el tiempo de contacto de 15 min favoreció la infiltración. El tamaño del pedúnculo del fruto no fue significativo. La información generada en este estudio permitirá plantear estrategias con fundamento científico para mejorar la inocuidad de las papayas producidas y empacadas en México y que las acciones se adapten a las condiciones y deficiencias particulares de las unidades de producción en nuestro país.
dc.description.tableofcontentsÍNDICE Resumen iii Dedicatoria v Agradecimientos vi Abreviaturas viii Índice de figuras xiv Índice de tablas xv 1. Antecedentes 17 1.1 Beneficios del consumo de frutas y hortalizas 17 1.2 Incremento en el consumo de frutas y hortalizas 17 1.3 Beneficios del consumo de papaya 18 1.4 Comercio de papaya 21 1.5 Retiros, brotes de ETA y alertas de importación asociadas a papayas 21 1.6 Fuentes de contaminación de productos hortofrutícolas 24 1.7 Cultivo, cosecha y empaque de papaya en Tecomán Colima. 26 1.8 Legislación en materia de inocuidad de frutas y hortalizas frescas 28 1.8.1 Buenas Prácticas Agrícolas 29 1.8.2 Sistema de Reducción de Riesgos de Contaminación (SRRC) 29 1.8.3 Standards for the Growing, Harvesting, Packing, and Holding of Produce for Human Consumption (Produce Safety Rule) de la Ley de Modernización en Inocuidad de Alimentos (FSMA). 32 2. Justificación 36 3. Objetivos 38 4. Hipótesis 39 5. Metodología 40 ix 10 5.1 Etapas del estudio 40 5.2 Metodología para el desarrollo de la etapa 1 42 5.2.1 Selección de la unidad de producción 42 5.2.2 Definición de las soluciones de lavado a evaluar y obtención de desinfectantes 42 5.2.3 Recolección de muestras de agua para irrigación y tierra previo y posterior al temporal de lluvias para la determinación de grupos indicadores (coliformes totales, fecales y E. coli) y Salmonella spp. 42 5.3 Metodología para el desarrollo de la etapa 2 46 5.3.1 Recolección de muestras de agua para uso postcosecha para la determinación de Salmonella y grupos indicadores (coliformes totales, fecales y E. coli) 46 5.3.2 Recolección de muestras de superficies en empaques de papaya para la determinación de Salmonella y grupos indicadores (enterobacterias, coliformes totales, E. coli, mohos y levaduras) 47 5.4 Análisis microbiológicos de muestras colectadas en campo y empaque en las etapas 1 y 2 50 5.4.1 Cuantificación de coliformes totales, fecales y E. coli por el método de filtración por membrana en muestras de agua de río, reservorio, irrigación y potabilizada 50 5.4.2 Cuantificación de coliformes totales, fecales y E. coli por el método de Número Más Probable en muestras de tierra 51 5.4.3 Cuantificación de enterobacterias, coliformes totales, E. coli, mohos y levaduras por el método de PetrifilmTM en muestras de superficies del empaque 52 5.4.4 Determinación de Salmonella por el método tradicional en muestras de agua de río, reservorio, irrigación, potabilizada, y tierra 53 5.4.5 Determinación de Salmonella por amplificación molecular isotérmica en muestras de agua. 55 5.4.6 Serotipificación de cepas de Salmonella 56 x 11 5.5 Metodología para el desarrollo de la etapa 3 56 5.6 Metodología para el desarrollo de la etapa 4 57 5.6.1 Validación del empleo del caldo neutralizante D/E para inactivar los desinfectantes aplicados en el proceso de lavado de papaya 57 5.6.1.1 Preparación del inóculo 58 5.6.1.2 Preparación de soluciones de lavado 58 5.6.1.3 Prueba de inactivación de desinfectantes con el caldo neutralizante D/E 59 5.6.2 Evaluación del efecto del acidificante-surfactante y la materia orgánica en la estabilidad de las soluciones de hipoclorito de sodio empleadas para el lavado de papayas. 60 5.6.2.1 Preparación de las soluciones de hipoclorito de sodio. 61 5.6.2.2 Medición de parámetros fisicoquímicos. 61 5.6.3 Evaluación intralaboratorio de la estabilidad y potencial antimicrobiano de las soluciones de las soluciones de lavado de papayas 62 5.6.3.1 Preparación del inóculo 62 5.6.3.2 Preparación de soluciones de lavado de papaya 63 5.6.3.3 Determinación de los parámetros fisicoquímicos 63 5.6.3.4 Evaluación de la reducción de Salmonella con las soluciones de lavado de papayas 63 5.6.4 Evaluación de la estabilidad química y potencial antimicrobiano de las soluciones de lavado de papayas en las instalaciones del empaque 64 5.6.4.1 Recolección de muestras de fruto para la determinación de grupos indicadores 65 5.6.4.2 Recolección de muestras de fruto para la determinación de Salmonella 65 5.6.4.3 Determinación de grupos indicadores en muestras de papayas 66 5.6.4.4 Determinación de Salmonella en muestras de papayas 67 xi 12 5.7 Metodología para el desarrollo de la etapa 5 67 5.7.1 Estudio de infiltración de Salmonella en papaya, según el nivel de corte del pedúnculo, tiempo de inmersión en las soluciones de lavado y grado de madurez del fruto 67 5.7.1.1 Obtención y Clasificación de papayas 68 5.7.1.2 Preparación del inóculo 68 5.7.1.3 Prueba de infiltración 69 5.8 Análisis Estadístico de los resultados 70 5.8.1 Análisis estadístico para los resultados de la Etapa 1 70 5.8.2 Análisis estadístico para los resultados de la Etapa 2 73 5.8.3 Análisis estadístico para los resultados de la Etapa 3 73 5.8.4 Análisis estadístico para los resultados de la Etapa 4 73 5.8.5 Análisis estadístico para los resultados de la Etapa 5 74 6. Resultados y Discusión 75 6.1 Etapa 1 75 6.1.1 Selección de la unidad de producción 75 6.1.2 Definición de las soluciones de lavado 75 6.1.3 Salmonella en agua para irrigación previo y posterior al temporal de lluvias 76 6.1.4 Evaluación del método Molecular Detection System (MDSTM) de 3MTM para detectar Salmonella 80 6.1.5 Recuento de coliformes totales, fecales y E. coli en agua para irrigación previo y posterior al temporal de lluvias 83 6.1.6 Coliformes totales, fecales, E. coli y Salmonella en muestras de tierra previo y posterior al temporal de lluvias 88 6.2 Etapa 2 94 6.2.1 Determinación de Salmonella, coliformes totales, fecales y E. coli en 94 xii 13 muestras de agua para uso postcosecha 6.2.2 Determinación de Salmonella y enterobacterias, coliformes totales, E. coli, mohos y levaduras en muestras de superficie clasificadas por zonificación higiénica 95 6.3 Etapa 3 104 6.3.1 Validación del empleo del caldo neutralizante D/E para inactivar los desinfectantes aplicados en el proceso de lavado de papaya 104 6.3.2 Evaluación del efecto del acidificante-surfactante y la materia orgánica en la estabilidad de las soluciones de hipoclorito de sodio empleadas para el lavado de papayas 107 6.3.3 Evaluación intralaboratorio de la estabilidad y potencial antimicrobiano de las soluciones de las soluciones de lavado de papayas 110 6.3.4 Evaluación de la estabilidad y potencial antimicrobiano de las soluciones de lavado de papayas en las instalaciones del empaque 114 6.4 Etapa 4 124 6.4.1 Estudio de infiltración de Salmonella en papaya, según el nivel de corte del pedúnculo, tiempo de inmersión en las soluciones de lavado y grado de madurez del fruto 124 7. Conclusiones 128 8. Recomendaciones 130 9. Bibliografía 132
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectSalmonella
dc.titlePREVALENCIA DE Salmonella DURANTE EL CULTIVO, COSECHA Y EMPAQUE DE PAPAYA (Carica papaya L.) EN TECOMÁN, COLIMA Y EVALUACIÓN DEL PROCESO DE DESINFECCIÓN
dc.typeTesis de Maestría
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderMuñiz Flores, Jorge Adrián
dc.coverageOCOTLAN, JALISCO
dc.type.conacytmasterThesis
dc.degree.nameMAESTRIA EN CIENCIAS
dc.degree.departmentCUCIENEGA
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara
dc.rights.accessopenAccess
dc.degree.creatorMAESTRO EN CIENCIAS
dc.contributor.directorCabrera Díaz, Elisa
dc.contributor.codirectorRodríguez García, Ma. Ofelia
Aparece en las colecciones:CUCIENEGA

Ficheros en este ítem:
Fichero TamañoFormato 
MCUCIENEGA10019FT.pdf1.18 MBAdobe PDFVisualizar/Abrir


Los ítems de RIUdeG están protegidos por copyright, con todos los derechos reservados, a menos que se indique lo contrario.