Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/81909
Registro completo de metadatos
Campo DCValorLengua/Idioma
dc.contributor.advisorSánchez Hernández, Carla Vanessa
dc.contributor.advisorReveles Torres, Luis Roberto
dc.contributor.advisorTorres Morán, Martha Isabel
dc.contributor.advisorGutiérrez Luna, Ramón
dc.contributor.advisorEscoto Delgadillo, Martha
dc.contributor.authorHernández Ayala, Erica Gabriela
dc.date.accessioned2020-08-16T01:44:00Z-
dc.date.available2020-08-16T01:44:00Z-
dc.date.issued2018-01-26
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/81909-
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.description.abstractEl cultivo de chile para secado (Capsicum annuum L.) en el Norte Centro de México es susceptible a enfermedades ocasionadas por fitoplasmas, las cuales al presentarse generan pérdidas entre el 10 y 20% de la producción. En el presente trabajo se determinó la densidad poblacional de cicadélidos y de plantas hospederas alternas que influyen sobre la incidencia de fitoplasmas en el cultivo. Mediante la técnica de línea de Canfield modificada (punto de pie), se determinó la frecuencia de especies vegetales y presencia de síntomas asociados a este patógeno. La captura de vectores fue mediante la técnica de golpe de red. Se extrajo DNA de 236 individuos de Circulifer tenellus, 144 plantas de chile y 347 plantas arvenses; todas plantas sintomáticas. Posteriormente se analizaron mediante PCR anidada de la región 16S rRNA. Las especies vegetales que se presentaron con mayor frecuencia fueron Eruca sativa (35%), Reseda luteola (20%) y Sisymbrium irio (18%) en Zacatecas, y Chenopodium album (30%), Capsella bursa-pastoris (23%) y R. luteola (23%) en Aguascalientes, siendo E. sativa y Ch. album las de mayor prevalencia del patógeno, con un rango de 51 a 131 muestras positivas en dichas especies. Fueron identificados 11 géneros de cicadélidos presentes en los sitos de estudio, entre los que destacan Aceratagallia, Agallia, Circulifer, Dalbulus, Empoasca y Graminella. Tanto en el cultivo, como en el insecto vector C. tenellus y plantas hospederas alternas fue identificado el fitoplasma Candidatus Phytoplasma Trifolii (16 SrVI).
dc.description.tableofcontentsÍNDICE DE FIGURAS ........................................................................................................... i ÍNDICE DE CUADROS ....................................................................................................... iii RESUMEN ............................................................................................................................ iv ABSTRACT ........................................................................................................................... v 1. INTRODUCCIÓN .............................................................................................................. 1 2. ANTECEDENTES ............................................................................................................. 3 2.1 Importancia del cultivo de Capsicum annuum en México ........................................... 3 2.2 Fitoplasmas ................................................................................................................... 5 2.2.1 Características generales ........................................................................................ 5 2.2.2 Clasificación de los fitoplasmas ............................................................................. 5 2.2.3 Distribución geográfica de los grupos de fitoplasmas ......................................... 11 2.2.4 Sintomatología asociada a fitoplasmas ................................................................ 13 2.2.5 Técnicas moleculares para la detección e identificación de fitoplasmas ............. 14 2.3 Transmisión de fitoplasmas ........................................................................................ 16 3. HIPÓTESIS ...................................................................................................................... 19 4. OBJETIVOS. .................................................................................................................... 19 5. MATERIAL Y MÉTODOS ............................................................................................. 20 5.1 Localidad .................................................................................................................... 20 5.2 Colecta de hospederas vegetales alternas ................................................................... 21 5.3 Colecta de insectos vectores ....................................................................................... 21 5.4 Detección e identificación de fitoplasmas .................................................................. 22 5.4.1 Extracción de DNA .............................................................................................. 22 5.4.2 PCR ...................................................................................................................... 22 5.4.3 Clonación ............................................................................................................. 23 5.4.4. Análisis de secuencia .......................................................................................... 23 5.5 Análisis estadístico ..................................................................................................... 23 6. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ...................................................................................... 25 6.1 Frecuencia de plantas hospederas alternas y detección de fitoplasmas ...................... 25 6.2 Diversidad de cicadélidos y fluctuación poblacional de los géneros portadores de fitoplasmas ........................................................................................................................ 31 6.3 Detección de fitoplasmas en el vector C. tenellus ...................................................... 36 6.4 Detección de fitoplasmas en cultivo de chile tipo mirasol ......................................... 38 6.4 Identificación del grupo taxonómico de los fitoplasmas. ........................................... 41 6.5 Influencia de las variables agroclimáticas sobre poblaciones de hospederos de fitoplasmas. ....................................................................................................................... 43 8. CONCLUSIONES ............................................................................................................ 51 9. LITERATURA CITADA ................................................................................................. 52
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectPalabras Clave Fitoplasmas
dc.subjectPcr
dc.subjectCapsicum Annuum
dc.subjectHospederas Alternas
dc.subjectCicadelidos
dc.subjectCirculifer Tenellus
dc.titleCaracterización del patosistema fitoplasma-chile (Capsicum annuum L.) en Zacatecas y Aguascalientes, México.
dc.typeTesis de Maestría
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderHernández Ayala, Erica Gabriela
dc.coverageZAPOPAN, JALISCO
dc.type.conacytmasterThesis-
dc.degree.nameMaestría en Ciencias en Biosistemática y Manejo de Recursos Naturales y Agrícolas-
dc.degree.departmentCUCBA-
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara-
dc.degree.creatorMaestra en Ciencias en Biosistemática y Manejo de Recursos Naturales y Agrícolas-
Aparece en las colecciones:CUCBA

Ficheros en este ítem:
Fichero TamañoFormato 
MCUCBA10099.pdf
Acceso Restringido
2.09 MBAdobe PDFVisualizar/Abrir    Request a copy


Los ítems de RIUdeG están protegidos por copyright, con todos los derechos reservados, a menos que se indique lo contrario.