Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem:
https://hdl.handle.net/20.500.12104/112491Registro completo de metadatos
| Campo DC | Valor | Lengua/Idioma |
|---|---|---|
| dc.contributor.advisor | Garay Martínez, Luz Eduviges | |
| dc.contributor.advisor | Cabrera Díaz, Elisa | |
| dc.contributor.author | Guerrero Alquicira, Patricia Alejandra | |
| dc.date.accessioned | 2026-04-13T17:59:19Z | - |
| dc.date.available | 2026-04-13T17:59:19Z | - |
| dc.date.issued | 2025-12-02 | |
| dc.identifier.uri | https://wdg.biblio.udg.mx | |
| dc.identifier.uri | https://hdl.handle.net/20.500.12104/112491 | - |
| dc.description.abstract | Las enfermedades transmitidas por alimentos (ETA) representan un desafío de salud pública mundial, debido a la resistencia creciente de los patógenos alimentarios y a su capacidad de formar biopelículas que dificultan su control mediante métodos tradicionales. En este contexto, la nanotecnología ha mostrado potencial para desarrollar agentes antimicrobianos alternativos, destacando la síntesis biológica o “verde” de nanopartículas metálicas como una alternativa sustentable frente a la síntesis química tradicional. La presente investigación evaluó el uso de mucílagos de mezquite (Prosopis laevigata) y linaza (Linum usitatissimum) como agentes reductores y estabilizantes en la obtención de nanopartículas de oro, plata y cobre. Se caracterizaron los mucílagos por su contenido de polifenoles, flavonoides y taninos, y se optimizaron parámetros como el pH, la temperatura y la concentración para la síntesis de nanopartículas. Estas se caracterizaron mediante UV-Vis, DRX, FT-IR, DLS y SEM, lo que confirmó tamaños nanométricos y morfologías adecuadas. La eficacia antimicrobiana y la capacidad de inhibir biopelículas se evaluaron frente a Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Salmonella Typhimurium y Pseudomonas aeruginosa. Las nanopartículas de plata mostraron la mayor actividad antimicrobiana y antibiopelícula, con concentraciones mínimas inhibitorias bajas (0.5-1 mg/mL), superando en algunos casos a la gentamicina. Las nanopartículas de cobre y oro también presentaron un efecto, aunque dependiente del tipo de mucílago y de la concentración. Se observó que las características fitoquímicas de los mucílagos influyen en la eficacia y la estabilidad de las nanopartículas, y que los mucílagos de mezquite suelen ser más efectivos. El ensayo de citotoxicidad in vitro reveló que las nanopartículas, en particular las de linaza, presentan una biocompatibilidad aceptable en leucocitos de ratón, mientras que algunas formulaciones, como las nanopartículas de cobre y plata sintetizadas con mucílago de mezquite, mostraron mayor citotoxicidad a concentraciones elevadas. Esta variabilidad en la biocompatibilidad puede estar relacionada tanto con el tipo de mucílago empleado como con la concentración de nanopartículas evaluada. Entre las limitaciones del estudio se encuentran la evaluación de un solo modelo celular murino y la falta de análisis a largo plazo, lo que podría influir en la interpretación de los resultados de citotoxicidad y en su extrapolación a otros sistemas biológicos. En conclusión, la síntesis verde de nanopartículas metálicas mediante mucílagos vegetales constituye una estrategia eficaz y sustentable para el control de patógenos alimentarios y la inhibición de biopelículas, ofreciendo una alternativa segura en comparación con la síntesis química. Se recomienda continuar optimizando los parámetros de síntesis y explorar combinaciones metálicas para maximizar la eficacia y minimizar los riesgos toxicológicos. | |
| dc.description.tableofcontents | I. AGRADECIMIENTOS ..................................................................................................................... II. DEDICATORIA .............................................................................................................................. III. ÍNDICE DE ABREVIATURAS ...................................................................................................... IV. ÍNDICE DE CONTENIDOS ........................................................................................................... V. ÍNDICE DE FIGURAS ..................................................................................................................... VI. ÍNDICE DE TABLAS ...................................................................................................................... VIII. RESUMEN ................................................................................................................................... IX. ABSTRACT .................................................................................................................................... 1. INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................... 2. ANTECEDENTES ........................................................................................................................... 2.1 Enfermedades Transmitidas por Alimentos (ETA) ...................................................................... 2.2 Bacterias formadoras de biopelículas ......................................................................................... 2.3 Control de microorganismos patógenos ..................................................................................... 2.3.1 Efecto antimicrobiano y antibiopelícula de las nanopartículas metálicas .............................. 2.3.2 Técnicas para evaluación de la actividad antimicrobiana y antibiopelícula ........................... 2.3.2.1 Concentración mínima inhibitoria (CMI) y concentración mínima bactericida (CMB) ......... 2.3.2.2 Evaluación de la formación de biopelículas mediante las técnicas de rojo Congo y cristal violeta ........................................................................................................................................... 2.4 Nanotecnología .......................................................................................................................... 2.4.1 Nanopartículas (NPs) ........................................................................................................... 2.5 Síntesis verde de nanopartículas................................................................................................ 2.5.1 Efecto del pH en la síntesis de NPs ..................................................................................... 2.5.2 Efecto de la temperatura en la síntesis de NPs .................................................................... 2.5.3 Efecto del tiempo de reacción y la concentración en la síntesis de NPs ............................. 2.6 Compuestos bioactivos como agentes reductores .................................................................... 2.6.1 Mucílagos .......................................................................................................................... 2.7 Fuentes de obtención de mucílagos ......................................................................................... 2.7.1 Mezquite (Prosopis laevigata) ............................................................................................ 2.7.2 Linaza (Linum usitatissimum) ............................................................................................. 2.8 Técnicas de caracterización de NPs ......................................................................................... 2.8.1 Espectroscopía de ultravioleta-visible (UV-Vis) .................................................................. 2.8.2 Difracción de rayos X (DRX) .............................................................................................. 2.8.3 Dispersión dinámica de luz (DLS) ...................................................................................... 2.8.4 Microscopía electrónica de barrido (SEM) .......................................................................... 2.8.5 Espectroscopía infrarroja por transformada de Fourier (FT-IR) .......................................... 3. JUSTIFICACIÓN ............................................................................................................................ 4. HIPÓTESIS .................................................................................................................................... 5. OBJETIVO GENERAL ................................................................................................................... 5.1 Objetivos específicos ................................................................................................................ 6. METODOLOGÍA ............................................................................................................................ 6.1 Obtención de materia prima y extracción de mucílagos ............................................................ 6.2 Evaluación de fitoquímicos en mucílagos de mezquite y linaza ................................................ 6.2.1 Detección y cuantificación de polifenoles totales (método de Folin-Ciocalteu) ................... 6.2.2 Detección y cuantificación de flavonoides (método de AlCl3) ............................................. 6.2.3 Determinación de proantocianidinas o taninos condensados ............................................. 6.3 Síntesis verde de nanopartículas de oro (NPs Au), plata (NPs Ag) y cobre (NPs Cu) con mucílagos de mezquite y linaza ...................................................................................................... 6.4 Caracterización de las nanopartículas ...................................................................................... 6.4.1 Plasmón superficial (UV-Vis) .............................................................................................. 6.4.2 Difracción de rayos X (DRX) .............................................................................................. 6.4.3 Espectroscopía infrarroja por la transformada de Fourier (FT-IR) ...................................... 6.4.4 Microscopía electrónica de barrido (SEM) .......................................................................... 6.4.5 Dispersión dinámica de la luz (DLS) .................................................................................. 6.5 Determinación de actividad antimicrobiana de las NPs metálicas............................................. 6.5.1 Reactivación y ajuste de densidad celular .......................................................................... 6.5.2 Porcentaje de inhibición por el método de microdilución en placa ...................................... 6.5.3 Determinación de la concentración mínima inhibitoria (CMI) y concentración mínima bactericida (CMB) ....................................................................................................................... 6.6 Evaluación de la inhibición de biopelículas de las NPs metálicas ............................................. 6.6.1 Ensayo agar rojo Congo (CRA) .......................................................................................... 6.6.2 Ensayo de cristal violeta .................................................................................................... 6.7 Evaluación toxicológica in vitro de las NPs metálicas ............................................................... 6.8 Análisis estadístico ................................................................................................................... 7. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ....................................................................................................... 7.1 Análisis bromatológico de semillas de mezquite y linaza .......................................................... 7.2 Extracción de mucílagos de mezquite y linaza ......................................................................... 7.3 Evaluación de fitoquímicos en los mucílagos de mezquite y linaza .......................................... 7.4 Síntesis de NPs de Au, Ag y Cu con mucílagos ....................................................................... 7.5 Plasmón superficial (UV-Vis) de NPs metálicas ........................................................................ 7.6 Ensayo de dispersión dinámica de la luz de las NPs metálicas ................................................ 7.7 Difracción de rayos X de NPs metálicas ................................................................................... 7.9 Espectrometría infrarroja de las NPs metálicas ........................................................................ 7.10 Análisis de microscopía electrónica de barrido (SEM) de las NPs metálicas .......................... 7.11 Determinación de actividad antimicrobiana de las NPs metálicas ........................................... 7.11.1 Microdilución en placa ...................................................................................................... 7.11.2 Concentración mínima inhibitoria y concentración mínima bactericida ............................. 7.12 Evaluación de la inhibición de biopelículas de las NPs metálicas ........................................... 7.12.1 Ensayo agar rojo Congo (CRA) ........................................................................................ 7.12.2 Ensayo de cristal violeta................................................................................................... 7.13 Evaluación de la citotoxicidad in vitro de NPs metálicas sintetizadas con mucílagos mediante ensayos de viabilidad en leucocitos de bazo de ratón BALB/c ....................................................... 8. CONCLUSIONES .......................................................................................................................... 9. RECOMENDACIONES .................................................................................................................. 11. REFERENCIAS ........................................................................................................................... 10. ANEXOS ............................................................................................................................... | |
| dc.format | application/PDF | |
| dc.language.iso | spa | |
| dc.publisher | Biblioteca Digital wdg.biblio | |
| dc.publisher | Universidad de Guadalajara | |
| dc.rights.uri | https://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp | |
| dc.subject | Sintesis Biologica | |
| dc.subject | Nanoparticulas Metalicas | |
| dc.subject | Mucilagos De Mezquite | |
| dc.subject | Prosopis Laevigata | |
| dc.subject | Linaza | |
| dc.subject | Linum Usitatissimum | |
| dc.subject | Evaluacion Antimicrobiana | |
| dc.subject | Antibiopeliculas | |
| dc.subject | Patogenos Alimentarios | |
| dc.title | SÍNTESIS BIOLÓGICA DE NANOPARTÍCULAS METÁLICAS UTILIZANDO MUCÍLAGOS DE MEZQUITE (Prosopis laevigata) Y LINAZA (Linum usitatissimum): EVALUACIÓN ANTIMICROBIANA Y ANTIBIOPELÍCULAS CONTRA PATÓGENOS ALIMENTARIOS | |
| dc.type | Tesis de Maestría | |
| dc.rights.holder | Universidad de Guadalajara | |
| dc.rights.holder | Guerrero Alquicira, Patricia Alejandra | |
| dc.coverage | GUADALAJARA, JALISCO | |
| dc.type.conacyt | masterThesis | |
| dc.degree.name | MAESTRIA EN CIENCIAS EN INOCUIDAD ALIMENTARIA | |
| dc.degree.department | CUCEI | |
| dc.degree.grantor | Universidad de Guadalajara | |
| dc.rights.access | openAccess | |
| dc.degree.creator | MAESTRO EN CIENCIAS EN INOCUIDAD ALIMENTARIA | |
| dc.contributor.director | Silva Jara, Jorge Manuel | |
| dc.contributor.codirector | Angulo Valadez, Carlos Eliud | |
| Aparece en las colecciones: | CUCEI | |
Ficheros en este ítem:
| Fichero | Tamaño | Formato | |
|---|---|---|---|
| MCUCEI11277FT.pdf | 2.02 MB | Adobe PDF | Visualizar/Abrir |
Los ítems de RIUdeG están protegidos por copyright, con todos los derechos reservados, a menos que se indique lo contrario.