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https://hdl.handle.net/20.500.12104/110126
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Campo DC | Valor | Lengua/Idioma |
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dc.contributor.advisor | Sanchez Hernandez, Carla Vanessa | |
dc.contributor.advisor | Rodriguez Gomez, Flor Del Carmen | |
dc.contributor.author | Raygoza Alcantar, Lizeth Nohemi | |
dc.date.accessioned | 2025-09-05T22:15:10Z | - |
dc.date.available | 2025-09-05T22:15:10Z | - |
dc.date.issued | 2025-08-08 | |
dc.identifier.uri | https://wdg.biblio.udg.mx | |
dc.identifier.uri | https://hdl.handle.net/20.500.12104/110126 | - |
dc.description.abstract | RESUMEN Algunas de las funciones del ensamblaje bacteriano del tracto gastrointestinal de los colibríes es promover el desarrollo y la función del sistema inmune mediante la producción de metabolitos, y competir directamente con los patógenos por espacio y nutrimentos. En este sentido, esta tesis tuvo los siguientes objetivos: a) En primer lugar, evaluar la actividad antagónica in vitro de bacterias aisladas de las heces del colibrí corona-violeta (Ramsomyia violiceps) frente a cepas de Bacillus spp. degradadoras de plumas, Escherichia coli, Salmonella enterica y Acinetobacter baumannii; b) En segundo lugar, analizar la ocurrencia de bacterias patógenas, Salmonella enterica, Klebsiella pneumoniae, Campylobacter jejuni y Listeria monocytogenes en las heces de R. violiceps y el colibrí pico-ancho (Cynanthus latirostris) en dos ambientes; y c) Finalmente, analizar la actividad antibacteriana de los metabolitos secundarios de Pseudomonas putida M5 frente a K. pneumoniae, Enterobacter aerogenes, Staphylococcus aureus, S. epidermidis, E. coli y S. enterica, e identifcar los metabolitos secundarios que se registraron con mayor abundancia producidos por P. putida M5. Para ello se eligieron dos ambientes, uno urbano y otro en un bosque tropical caducifolio altamente perturbado. En cada ambiente, se seleccionaron tres sitios y se colocaron redes de niebla. Se capturaron 130 individuos y se recolectaron muestras fecales de ambas especies de colibríes. Para el primer objetivo se aislaron las bacterias cultivables de las heces de 40 individuos de R. violiceps. A las bacterias se les realizaron ensayos de actividad antagónica. El resto de las muestras de las heces de colibríes fueron utilizadas para la detección de patógenos mediante ensayos de qPCR. Por último, se extrajeron los compuestos orgánicos de Pseudomonas putida M5, cepa que registró la mayor actividad antagónica. Estos compuestos se caracterizaron utilizando cromatografía líquida y espectrometría de masas. Los resultados indicaron que, de un total de 134 bacterias aisladas de las heces de R. violiceps, las cepas Bacillus spp. y Pseudomonas putida M5 registraron actividad antibacteriana. Además, se detectó una frecuencia alta de K. pneumoniae en las heces del colibrí R. violiceps y C. latirostris. En contraste, S. enterica y L. monocytogenes fueron menos frecuentes, y C. jejuni no se detectó en ninguna muestra. Finalmente, los metabolitos identificados de P. putida M5 fueron principalmente policétidos macrólidos. Tanto el análisis de impacto de vías como el análisis de sobrerrepresentación revelaron vías de interés debido a sus funciones en la inhibición de la biopelícula y la síntesis de fármacos. | |
dc.description.tableofcontents | TABLA DE CONTENIDO AGRADECIMIENTOS ..............................................................................................................i DEDICATORIA ........................................................................................................................ ii RESUMEN ............................................................................................................................. iii ABSTRACT ............................................................................................................................ iv TABLA DE CONTENIDO .........................................................................................................v LISTA DE FIGURAS ............................................................................................................. viii LISTA DE CUADROS ............................................................................................................ xii LISTA DE ANEXOS ............................................................................................................. xiiv CAPÍTULO I. INTRODUCCIÓN GENERAL ............................................................................ 1 1.1 Reseña del contenido de tesis .............................................................................. 1 1.2 El microbioma del tracto gastrointestinal de las aves silvestres ............................ 2 1.3 Composición bacteriana del tracto gastrointestinal de los colibríes (Trochilidae) y sus funciones ecológicas ............................................................................................ 3 1.4 Patógenos bacterianos en los colibríes (Throchilidae) .......................................... 4 1.5 Resistencia antimicrobiana y microbioma aviar como fuente de compuestos naturales antibacterianos ............................................................................................ 4 1.6 Justificación .......................................................................................................... 6 1.7 Hipótesis ............................................................................................................... 8 1.8 Objetivo general .................................................................................................... 9 1.8.1 Objetivos específicos .............................................................................. 9 1.9 Literatura citada .................................................................................................. 10 CAPÍTULO II. In vitro antagonistic activity of Bacillus spp. and Pseudomonas putida M5 isolated from feces of the violet‑crowned hummingbird (Ramosomyia violiceps) from an urban environment.......................................................................................................................... 16 2.1 Abstract…………………………………………………………………………………. 17 2.2 Introduction…………………………………………………………………………….. 17 2.3 Methods………………………………………………………………………………… 19 2.3.1 Fieldwork………………………………………………………….………… 19 2.3.2 Ethics statement……………………………………………….…………… 19 2.3.3 Bacteria culture and isolation………………………………….………...... 19 vi 2.3.4 Culture conditions of gram-positive FDB……………………………….... 20 2.3.5 Culture conditions of gram-negative bacteria…………………………… 20 2.3.6 Antagonism test: cross streak method…………………………………... 20 2.3.7 Antagonism test: radial streak method…………………………………... 20 2.3.8 Polystyrene microplate method…………………………………………... 20 2.3.9 Extraction of DNA………………………………………………………….. 21 2.3.10 16S rRNA gene amplification………………………………….………… 21 2.3.11 Data analysis……………………………………………………………… 21 2.4 Results………………………………………………………………………………….. 22 2.4.1 Antagonistic activity: cross streak test……………………………..…… 22 2.4.2 Antagonistic activity: radial streak test…………………………………... 22 2.4.3 Antagonistic activity: Polystyrene microplate test.……………………... 22 2.5 Discussion……………………………………………………………………………… 24 2.6 References……………………………………………………………………………... 27 CAPÍTULO II. ANEXO A. ...................................................................................................... 32 CAPÍTULO III. Pathogenic Bacteria Associated with the Feces of the Violet-crowned (Ramosomyia violiceps) and Broad-billed (Cynanthus latirostris) Hummingbirds in Disturbed Forest and an Urban Environment in West-central Mexico .................................................. 52 3.1 Abstract ............................................................................................................... 53 3.2 Introduction ......................................................................................................... 54 3.3 Methods .............................................................................................................. 55 3.3.1 Study species ....................................................................................... 56 3.3.2 Study sites ............................................................................................ 57 3.3.3 Sample collection ................................................................................. 59 3.3.4 DNA extraction and 16S rRNA amplification ......................................... 59 3.3.5 Presence/absence of pathogen detection by real-time PCR ................. 59 3.3.6 Statistical analysis ................................................................................ 60 3.4 Results ................................................................................................................ 63 3.4.1 Effect of hummingbird species, molt, environment type, and potential contamination sources on the presence of bacterial pathogens ..................... 66 3.5 Discussion .......................................................................................................... 69 vii 3.5.1 Effect of hummingbird species, molt, environment type, and potential contamination sources on the presence of bacterial pathogens ..................... 69 3.6 Acknowledgments………………………………………………………... 72 3.7 Ethics of wildlife management ………………………………………….. 73 3.9 Literature cited .................................................................................................... 73 3.8 Funding statement ………………………………………………………. 73 CAPÍTULO III. ANEXO B ...................................................................................................... 83 CAPÍTULO IV. Characterization of bioactive secondary metabolites of Pseudomonas putida M5 isolated from the feces of the hummingbird Ramosomyia violiceps .............................. 128 4.1 Abstract ........................................................................................................... 1299 4.2 Introduction ................................................................................................... 13030 4.3 Methods ............................................................................................................ 131 4.3.1 Strain and Growth Conditions ............................................................. 132 4.3.2 Preparation of Extracts and Metabolites Concentrate ....................... 1322 4.3.3 Antibacterial Activity Test .................................................................... 133 4.3.4 Liquid Chromatography–Mass Spectrometry Analysis ........................ 133 4.3.5 Statistical Analysis .............................................................................. 134 4.4 Results .............................................................................................................. 135 4.4.1 Metabolite Identification ...................................................................... 138 4.4.2 Metabolic Pathway Analysis ............................................................... 139 4.5 Discussion ........................................................................................................ 154 4.5.1 Metabolite Identification ...................................................................... 154 4.5.2 Metabolic Pathway Analysis ............................................................... 156 4.6 Acknowledgments ............................................................................................. 158 4.7 References ....................................................................................................... 158 CAPÍTULO IV. ANEXO C ................................................................................................... 181 CAPÍTULO V. CONCLUSIONES GENERALES ................................................................. 217 | |
dc.format | application/PDF | |
dc.language.iso | spa | |
dc.publisher | Biblioteca Digital wdg.biblio | |
dc.publisher | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.uri | https://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp | |
dc.subject | Bacterias | |
dc.subject | Heces | |
dc.subject | Ramosomyia Violiceps. Cynanthus Latirostris | |
dc.subject | Antagonica | |
dc.subject | Patogenos | |
dc.subject | Metabolitos | |
dc.subject | Antibacterianos. | |
dc.title | Bacterias en las heces de Ramosomyia violiceps y Cynanthus latirostris: actividad antagónica, determinación de patógenos y caracterización de metabolitos antibacterianos | |
dc.type | Tesis de Doctorado | |
dc.rights.holder | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.holder | Raygoza Alcantar, Lizeth Nohemi | |
dc.coverage | ZAPOPAN JALISCO | |
dc.type.conacyt | doctoralThesis | |
dc.degree.name | DOCTORADO EN CIENCIAS EN BIOSISTEMATICA, ECOLOGIA Y MANEJO DE RECURSOS NATURALES Y AGRICOLAS DT | |
dc.degree.department | CUCBA | |
dc.degree.grantor | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.access | openAccess | |
dc.degree.creator | DOCTOR EN CIENCIAS EN BIOSISTEMATICA, ECOLOGIA Y MANEJO DE RECURSOS NATURALES Y AGRICOLAS DT | |
dc.contributor.director | Rodríguez Zaragoza, Fabián Alejandro | |
dc.contributor.codirector | Hernández Zulueta, Joicye | |
Aparece en las colecciones: | CUCBA |
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