Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: https://hdl.handle.net/20.500.12104/104867
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dc.contributor.authorPalafox Mariscal, Luis Arturo
dc.date.accessioned2024-09-18T17:31:40Z-
dc.date.available2024-09-18T17:31:40Z-
dc.date.issued2023-07-13
dc.identifier.urihttps://wdg.biblio.udg.mx
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12104/104867-
dc.description.abstractEl cáncer cervicouterino (CaCu) es un grave problema de salud pública, se sitúa como uno de los tipos de cáncer con mayor incidencia y mortalidad en mujeres en el mundo. La principal causa de la mortalidad del CaCu es su alta taza de diseminación tumoral y metástasis, la cual tiene como proceso clave la transición epitelio-mesénquima (del inglés: Epithelial Mesenchymal Transition) (EMT) este proceso induce la migración, invasión y metástasis de células tumorales. Se sabe que el microambiente tumoral participa activamente a través de la señalización de distintas citocinas como TNF-α, TGF-β1 entre otras, a la activación de vías de señalización como el NF-B (del inglés: Nuclear factor kappa-light- chain-enhancer of activated B cells) y Smad (del inglés Small mothers against decapentaplegic) las cuales son las responsables de la activación de la EMT, lo que sugiere que el NF-B y la vía de señalización Smad pueden ser blancos potenciales para inhibir la EMT. En este sentido se ha reportado que la pentoxifilina (PTX) inhibe la actividad de NF- B y la actividad de los factores de transcripción Smad 2/3. Además, existen reportes que muestran que la PTX reduce la migración, invasión celular y la actividad de las metaloproteasas; estos efectos en conjunto sugieren que la PTX pudiera inhibir la EMT, sin embargo, hasta el momento no existen reportes que hayan demostrado esta hipótesis en células derivadas de CaCu. En este trabajo se utilizó la línea celular CaSki como modelo experimental y se determinó que el TGF-β1 (10 ng/mL) y el TNF-α (10 ng/mL) + TGF-β1 (10 ng/mL) incrementan las proteínas N-cadherina y Vimentina, así como la migración e invasión celular a través de la fosforilación de IκBα (S-32) y P65 (S-536) y la activación de Smad (corroborado a través del incremento de expresión del gen SERPINE1). Por su parte comprobamos que la PTX añadida como pretratamiento una 1 hora antes de las citocinas, disminuye efectivamente la expresión de N-cadherina y Vimentina, así como la proliferación, migración y la invasión celular a través de la disminución de la actividad de NF-κB y la vía Smad. Por lo tanto, proponemos evidencia de las propiedades anti-EMT de la PTX en células CaSki de cáncer cervicouterino.
dc.description.tableofcontentsIntroducción .................................................................................................................................. 13 1.1 Cáncer cervicouterino ............................................................................................................. 13 1.2 Virus del papiloma humano .................................................................................................... 16 1.3 Transición Epitelio-Mesénquima (EMT)................................................................................ 18 1.4 Vías de señalización de la EMT en cáncer.............................................................................. 22 1.5 La vía de señalización NF-κB................................................................................................. 22 1.6 La vía de señalización Smad ................................................................................................... 25 1.7 SERPINE1 y su importancia en la EMT ................................................................................. 27 1.8 TNF-α y TGF-β1: sinergia de activación de la EMT.............................................................. 28 1.9 Pentoxifilina ............................................................................................................................ 31 2. Justificación................................................................................................................................... 33 3. Planteamiento del problema .......................................................................................................... 34 4. Hipótesis........................................................................................................................................ 35 5. Objetivo general............................................................................................................................ 35 6. Objetivos particulares.................................................................................................................... 36 7. Diseño metodológico..................................................................................................................... 37 7.1 Tabla de Operacionalización de variables............................................................................... 37 7.2 Diagrama metodológico .......................................................................................................... 38 8. Materiales y métodos .................................................................................................................... 39 8.1 Cultivo de líneas celulares....................................................................................................... 39 8.2 Drogas y reactivos................................................................................................................... 39 8.3 Inducción de la Transición- Epitelio- Mesénquima (EMT). ................................................... 40 8.4 Modelo de estudio................................................................................................................... 40 8.5 Viabilidad con 7-AAD Viability Staining por citometría de flujo........................................ 42 8.6 Evaluación de la expresión de E-cadherina, N-cadherina y Vimentina por Western Blot...... 42 8.7 Ensayo de proliferación celular por sulforodamina B (SRB).................................................. 44 8.8 Migración por cierre de herida ................................................................................................ 44 8.9 Invasión celular por quimiotaxis (con matrigel) ..................................................................... 45 8.10 Determinación de la fosforilación de p65 e IkBa por In-Cell Western (ICW)...................... 47 8.11 PCR en tiempo real ............................................................................................................... 49 8.12 Análisis estadístico................................................................................................................ 50 8.13 Financiamiento...................................................................................................................... 51 7 8.14 Consideraciones éticas.......................................................................................................... 51 8.15 Consideraciones de bioseguridad .......................................................................................... 51 9. Resultados..................................................................................................................................... 53 9.1 Determinación del modelo de estudio..................................................................................... 53 9.2 Efecto del TNF-α, TGF-β1 y PTX sobre la viabilidad de células CaSki por citometría de flujo utilizando 7-AAD.......................................................................................................................... 53 9.3 Efecto de La PTX en la expresión de N-cadherina y Vimentina en células CaSki en EMT inducida por TNF-α + TGF-β1...................................................................................................... 55 9.4 La PTX disminuye efectivamente la proliferación de células CaSki en EMT........................ 57 9.5 La PTX disminuye la migración de células CaSki en EMT.................................................... 58 9.6 La PTX disminuye la invasión de las células CaSki inducidas a EMT................................... 60 9.7 La PTX disminuye la activación de la vía de señalización canónica de NF-κB en células CaSki en estado basal y en EMT................................................................................................... 61 9.8 La PTX disminuye la expresión del mRNA de la SERPINE1................................................ 65 10. Discusión..................................................................................................................................... 67 11. Conclusión................................................................................................................................... 72 12. Perspectivas................................................................................................................................. 73 13. Bibliografía ................................................................................................................................. 74 14. Anexos.........................................................................................................................................
dc.formatapplication/PDF
dc.language.isospa
dc.publisherBiblioteca Digital wdg.biblio
dc.publisherUniversidad de Guadalajara
dc.rights.urihttps://www.riudg.udg.mx/info/politicas.jsp
dc.subjectPentoxifilina
dc.subjectNf-?b
dc.subjectCancer Cervicouterino
dc.titleEfecto de la pentoxifilina sobre la actividad de NF-κB en la transición epitelio-mesénquima inducida in vitro, en líneas celulares de cáncer cervicouterino.
dc.typeTesis de Doctorado
dc.rights.holderUniversidad de Guadalajara
dc.rights.holderPalafox Mariscal, Luis Arturo
dc.coverageGUADALAJARA, JALISCO
dc.type.conacytdoctoralThesis
dc.degree.nameDOCTORADO EN CIENCIAS BIOMEDICAS
dc.degree.departmentCUCS
dc.degree.grantorUniversidad de Guadalajara
dc.rights.accessopenAccess
dc.degree.creatorDOCTOR EN CIENCIAS BIOMEDICAS
dc.contributor.directorHernández Flores, Georgina
dc.contributor.codirectorBravo Cuellar, Alejandro
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